生物硫醇化合物,如谷胱甘肽(GSH)、半胱氨酸(Cys)和高半胱氨酸(Hcy),在生理活动中扮演着重要角色,其中GSH是细胞内含量最高的硫醇化合物,在维持生物体内的氧化还原平衡方面起着重要作用[1-4]。当生物体内GSH的含量偏离正常范围时,可能会导致癌症、阿尔茨海默症,以及其它一些疾病的发生[5]。因此,发展有效的方法用于跟踪监测生理环境中GSH显得尤为重要[6-9]。
荧光探针非常适合用于生物体系中检测含巯基的生物分子。已报道的硫醇化合物荧光探针主要利用巯基的强亲核能力,如Michael加成反应[10]、断裂2, 4-二硝基苯磺酸酯[11]、与醛基的环加成反应[12]等等。众所周知,几种硫醇化合物包括GSH、Cys和Hcy具有类似的反应活性,因此选择性检测特定硫醇化合物具有很大的挑战性。
BODIPY染料具有相对较高的摩尔吸光系数和荧光量子产率, 以及生理环境下稳定性好等特性,更重要的是, 可以通过改变BODIPY结构中吡咯环上的取代基,调节BODIPY染料的光物理性质。Yang等[6]设计合成了氯代BODIPY化合物,其可与含巯基的氨基酸发生反应;其中与Cys/Hcy经由芳香亲核取代反应、分子内的芳香碳硫氮转换反应生成氮取代的BODIPY;与GSH只发生芳香亲核取代反应生成硫取代BODIPY。我们课题组同样也发现调节BODIPY结构中取代基的推拉电子能力, 可以有效改变其与亲核试剂的反应活性[7]。为了进一步证实该设计思想,我们研究了新型荧光探针CN-B-Cl,其可与含巯基氨基酸快速反应生成不同产物,进而可高选择性的识别检测GSH。
结合已有的工作[6, 7],我们推测CN-B-Cl与3种含巯基氨基酸的反应机理如图 1所示。GSH中的巯基能够取代BODIPY中的氯原子,生成硫取代产物,引起荧光信号红移。Cys和Hcy同样可以发生上述的亲核取代反应,然而Cys和Hcy中的氨基因处于合适位置,可进一步经由五元环和六元环过渡态发生分子内的取代反应,生成氨基取代BODIPY,该反应过程能够引起荧光发生蓝移并且强度变弱。需要注意的是GSH中的氨基因距离硫碳键远,不能经由大环过渡态生成氮取代BODIPY。根据BODIPY衍生物发光性能的不同,CN-B-Cl可用来检测GSH。
合成中涉及的溶剂和药品都是国产分析纯级别,无水反应所需溶剂均经干燥、重蒸过程。反应均在氩气保护下进行。1HNMR和13CNMR用Bruker AV-400核磁共振波谱仪测定,质谱由Waters LCT Premier XE质谱仪测定。
1.2 目标化合物的合成化合物4的合成可参照文献进行[13],目标化合物CN-B-Cl的合成路线见图 2。
向250 mL茄形烧瓶加入90 mL重蒸乙醇,随后依次加入吡咯醛(0.95 g, 0.01 mol)、丙二腈(0.73 g, 0.011 mol)。待固体溶解后加入2.8 mL哌啶。缓慢升温至85 ℃,反应8 h。反应完全后,将反应体系降至室温,真空下除去溶剂,得到粗产物。层析硅胶柱纯化得到黄色固体化合物1,洗脱剂为PE:EA=20:1,产率为89.7%。
1HNMR(CDCl3, 400 MHz): 9.81(s, 1H), 7.51(s, 1H), 7.31(s, 1H), 7.00(s, 1H), 6.50~6.48(m, 1H); 13CNMR(CDCl3, 100 MHz): 146.1, 130.3, 126.8, 115.6, 114.7, 114.4, 69.7。
1.2.2 化合物5的合成茄形烧瓶中加入苯甲酰吡咯氯(206 mg, 1 mmol),冰浴下滴加POCl3 (0.136 mL, 1.5 mmol)。滴加完毕将反应体系移至室温搅拌30 min。然后滴加化合物1 (172 mg, 1.2 mmol)的1, 2-二氯乙烷的溶液(30 mL)至上述反应体系中。在惰性气体保护下,缓慢升温至85 ℃,回流反应10 h。反应完成后,冰浴条件下,缓慢加入饱和的NaHCO3溶液,直到反应体系无气泡产生。加入二氯甲烷萃取,有机相用水洗涤3次,分离出二氯甲烷层,无水Na2SO4干燥后,抽滤,蒸除溶剂,得到粗产物化合物5,直接进行下一步反应。
1.2.3 化合物CN-B-Cl的合成量取30 mL重蒸二氯甲烷溶解化合物5并加入到茄形烧瓶中,冰浴条件下,移液枪量取Et3N(0.693 mL, 0.005 mol)滴加至上述体系中,搅拌15 min后,再向反应体系中缓慢滴加BF3·Et2O(0.631 mL, 0.005 mol),搅拌15 min。将反应体系升温至室温,并继续搅拌12 h。反应完成后,向体系中加入40 mL去离子水,二氯甲烷萃取,有机相用水洗涤3次;二氯甲烷层,用无水Na2SO4干燥。层析硅胶柱纯化得到青色固体,洗脱剂极性为PE:DCM=1:1,产率46.5 %。
1HNMR (CDCl3, 400 MHz):8.29 (s, 1H), 7.69~7.65 (m, 2H), 7.61~7.57 (t, 2H), 7.53~7.52 (m, 2H), 7.16~7.15 (d, 1H), 6.90~6.89 (d, 1H), 6.67~6.66 (d, 1H); 13CNMR (CDCl3, 100 MHz):153.1, 146.8, 145.5, 142.6, 137.6, 136.9, 136.0, 132.2, 131.7, 130.6, 128.9, 128.7, 123.0, 121.3, 113.8, 113.2, 82.8; HRMS (ESI, m/z): [M + Na]+ calcd for C19H10BClF2N4Na: 401.0553, Found: 401.0543。
2 结果与讨论 2.1 CN-B-Cl对GSH、Cys/Hcy的光谱响应如图 3所示,化合物CN-B-Cl在560 nm处有一个强的吸收峰,而当1 mmol/L GSH存在时,CN-B-Cl (10 μmol/L,HEPES/乙腈,体积比为1:1,pH 7.4) 可迅速转化为硫取代产物,反应过程可在1 s内完成。反应过程中,560 nm处的吸收降低,同时在583 nm处出现一个新的吸收峰。CN-B-Cl同样可与Cys/Hcy发生快速反应,生成氮取代产物,伴随着新吸收峰蓝移至528 nm。以上结果表明,CN-B-Cl可通过比色法用以区分GSH和Cys/Hcy。
同样,GSH、Cys/Hcy可引起探针分子CN-B-Cl荧光的明显变化,如图 4所示。CN-B-Cl在578 nm处有一个强荧光发射峰。向CN-B-Cl的溶液中(10 μmol/L,HEPES/乙腈,体积比为1:1,pH 7.4) 加入1 mmol/L GSH,探针在578 nm处的发光下降,同时在608 nm处出现一个新的发射峰。因此,CN-B-Cl可作为一个基于比值法GSH荧光探针。与此对应,CN-B-Cl与Cys/Hcy反应则主要表现为发光的猝灭和发光位置的蓝移。上述荧光变化均可快速完成,这是因为双氰基的强吸电子效应使得探针CN-B-Cl化学活性较高。总之,CN-B-Cl是一个优良荧光探针,可通过比值法选择性区分GSH和Cys/Hcy。
我们考察了常见氨基酸等干扰物种对GSH响应的影响,结果如图 5所示。只有GSH能引起荧光强度比值I608/I578明显变化,反应前后比值增大近7倍。其它干扰物种存在时,荧光强度比值I608/I578保持基本不变。由此表明,探针CN-B-Cl能够选择性识别GSH。
测试CN-B-Cl对GSH光谱响应的灵敏度,结果如图 6所示。随GSH含量从1 μmol/L增加至100 μmol/L,CN-B-Cl在578 nm处的荧光强度值逐渐降低,同时,608 nm处荧光强度缓慢地增加,荧光强度比值I608/I578显著增加。由图 7可以看出,在GSH浓度小于5 μmol/L时,荧光强度比值I608/I578与GSH浓度呈线性关系。根据公式DL = 3σ/k,计算得到检测限为4.82×10-9 mol/L,表明探针CN-B-Cl对GSH呈现高的灵敏度。
本文从吡咯醛出发,合成了双氰基修饰的BODIPY衍生物CN-B-Cl。实验证实,探针CN-B-Cl具有优良的化学反应活性,能够迅速与含巯基的氨基酸反应。CN-B-Cl能够与GSH迅速发生亲核取代反应生成硫取代BODIPY;而与Cys/Hcy则经由芳香亲核取代反应、分子内的芳香碳硫氮转换反应生成氮取代BODIPY。探针CN-B-Cl在发生硫基或氨基取代过程中,其光物理性质发生显著的变化,因而可有效区分GSH与Cys/Hcy。
致谢 感谢国家自然科学基金(21372083, 21672062) 对本研究的支持。[1] | Hwang C, Sinskey A J, Lodish H F. Oxidized redox state of glutathione in the endoplasmic reticulum[J]. Science, 1992, 257(5076): 1496. DOI:10.1126/science.1523409 |
[2] | Dalton T P, Shertzer H G, Puga A. Regulation of gene expression by reactiveoxygen[J]. Annual Review of Pharmacology and Toxicology, 1999, 39: 67. DOI:10.1146/annurev.pharmtox.39.1.67 |
[3] | Meister A. Glutathione metabolism and its selective modification[J]. The Journal of Biological Chemistry, 1988, 263(33): 17205. |
[4] | Akerboom T P, Bilzer M, Sies H. The relationship of biliary glutathione disulfide efflux and intracellular glutathione disulfide content in perfused rat liver[J]. The Journal of Biological Chemistry, 1982, 257(8): 4248. |
[5] | Lu S C. Regulation of glutathione synthesis[J]. Molecular Aspects of Medicine, 2009, 30(1-2): 42. DOI:10.1016/j.mam.2008.05.005 |
[6] | Niu L Y, Guan Y S, Chen Y Z, Wu L Z, Tung C H, Yang Q Z. BODIPY-based ratiometricfluorescent sensor for highly selective detection of glutathione over cysteine and homocysteine[J]. Journal of the American Chemical Society, 2012, 134(46): 18928. DOI:10.1021/ja309079f |
[7] | Wang F, Guo Z, Li X, Li X, Zhao C. Development of a small molecule probe capable ofdiscriminating cysteine, homocysteine, and glutathione withthree distinct turn-on fluorescent outputs[J]. Chemistry-An European Journal, 2014, 20(36): 11471. DOI:10.1002/chem.v20.36 |
[8] | Wang F, An J, Zhang L, Zhao C. Construction of a fluorescence turn-on probe for highly discriminating detection of cysteine[J]. RSC Advances, 2014, 4: 53437. DOI:10.1039/C4RA11167B |
[9] | Wang F, Zhou L, Zhao C, Wang R, Fei Q, Luo S, Guo Z, Tian H, Zhu W H. A dual-response BODIPY-based fluorescent probe for the discrimination of glutathione from cysteine and homocysteine[J]. Chemical Science, 2015, 6: 2584. DOI:10.1039/C5SC00216H |
[10] | Jung H, Ko K, Kim G, Lee A, Na Y, Kang C, Lee J, Kim J. Coumarin-based thiolchemosensor: synthesis, turn-on mechanism, and its biological application[J]. Organic Letters, 2011, 13(6): 1498. DOI:10.1021/ol2001864 |
[11] | Lim C, Masanta G, Kim H, Han J, Kim H, Cho B. Ratiometricdetection of mitochondrial thiols with a two-photon fluorescent probe[J]. Journal of the American Chemical Society, 2011, 133(29): 11132. DOI:10.1021/ja205081s |
[12] | Zhao C, Li X, Wang F. Target-triggered NIR emission with a large stokes shift for the detection and imaging of cysteine in living cells[J]. Chemistry-An Asian Journal, 2014, 9(7): 1777. DOI:10.1002/asia.v9.7 |
[13] | Zhao C, Zhang Y, Feng P, Cao J. Development of a borondipyrromethene-based Zn2+ fluorescent probe: solvent effects on modulation sensing ability[J]. Dalton Transactions, 2012, 41: 831. DOI:10.1039/C1DT10797F |